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細胞周期是指細胞從一次分裂結(jié)束起到下一次分裂結(jié)束為止的活動過程，分為間期與分裂期兩個階段。如下圖：
G0期：這一期的細胞稱為休眠細胞，細胞暫時脫離分裂周期,不進行DNA復(fù)制和分裂。但這些細胞可在某些條件的誘導(dǎo)下可重新開始DNA合成, 進行細胞分裂。
G1 期：主要合成RNA、核糖體、蛋白質(zhì)、脂類和碳水化合物。
S期：這個時期主要合成DNA, 同時還會合成組蛋白, DNA復(fù)制所需的酶都在這一時期合成。
G2期：DNA合成后期。主要大量合成ATP、RNA、蛋白質(zhì), 包括微絲微管蛋白。
M期：RNA合成停止, 蛋白質(zhì)合成減少, 染色體高度螺旋化。
細胞周期檢測的原理：
PI法是經(jīng)典的周期檢測方法，PI是碘化丙啶(Propidium)，一種雙鏈DNA的熒光染料，碘化丙啶和雙鏈DNA結(jié)合后可產(chǎn)生熒光，并且熒光強度和雙鏈DNA的含量成正比。細胞內(nèi)的DNA被碘化丙啶染色后，可以用流式細胞儀對細胞進行DNA含量測定，然后根據(jù)DNA含量的分布情況，可進行細胞周期和細胞凋亡分析。
通常正常細胞的G0/ G1 期具有二倍體細胞的DNA含量(2N)，G2/ M 期具有四倍體細胞的DNA 含量(4N) ,而S期的DNA 含量介于2N和4N之間。細胞用冰乙醇固定通透后，PI可以與細胞的DNA結(jié)合，其熒光強度直接反映了細胞內(nèi)DNA含量。
因此，可以通過流式細胞內(nèi)DNA含量進行檢測，將細胞周期區(qū)分為G1/G0 期，S 期和G2/M 期,并可得出各個時期細胞百分數(shù)。
細胞周期檢測實驗流程：
收集細胞：A: 收集細胞5~20×105于離心管中，若細胞比較小(如淋巴細胞)400 g離心，若細胞比較大(如腫瘤細胞)300 g離心，5~10 min，棄去培養(yǎng)液;
洗滌：加入1 ml冷PBS(提前放4℃預(yù)冷)洗滌1次，離心棄去上清;
固定前處理：利用管底殘留的液體，輕彈管底，將沉淀重懸成細胞懸液，避免細胞成團;
細胞固定：加入約1 ml -20℃預(yù)冷的無水乙醇中，輕輕吹打混勻，-20℃固定1 h或過夜;
洗滌：加入1 ml冷PBS(提前放4℃預(yù)冷)洗滌1次，300 g離心10min，棄去上清;
RNA酶消化：300 g 離心 5 min，吸盡上清后，加入 100 μL 的 RNase A 并充分懸浮細胞，37°C 水浴 30 min。
PI染色：加入400μL的PI溶液并充分混勻，4℃避光孵育30 min;
上機檢測：用流式細胞儀在激發(fā)波長488nm波長處檢測紅色熒光，低速獲取細胞，采用分析軟件進行DNA含量分析。
細胞周期檢測注意事項：
1、培養(yǎng)細胞注意無菌環(huán)境。
2、染液等物質(zhì)有一定毒性，注意防護。
3、本實驗上機檢測所需收集細胞量較多，收集細胞時盡量多收集一些。
4、本實驗對細胞離心，重懸次數(shù)較多，注意動作輕緩，避免過多地損傷細胞。
5、固定時必須預(yù)冷PBS重懸打入無水乙醇中，二者順序不可顛倒。
6、培養(yǎng)細胞時，以對數(shù)期處理為宜，避免細胞量過少導(dǎo)致收集細胞量不足或者細胞量過多導(dǎo)致細胞開始大量死亡造成的實驗誤差。
7、固定后細胞雖然可以保存較長時間后再上機檢測，為避免不可控因素影響最好及早上機檢測。
